РУКОВОДСТВО по оказанию фитосанитарных диагностических услуг (ФАО, Версия 1.1)

138

8.2.4 Маркировка образца

Очень важно, чтобы на всех подготов-

ленных образцах, которые будут включе-
ны в любую постоянную коллекцию, не-
зависимо от того, наколоты они, хранятся
в этиловом спирте или на предметном
стекле, имелись правильно написанные
и соответствующие этикетки. Этикетки
должны быть распечатаны с использова-
нием стойких чернил, нерастворимых в
воде и этиловом спирте. Форматы этике-
ток для энтомологических образцов ука-
заны в данном руководстве.

Никогда не используйте обе стороны

этикетки или шариковую ручку.

8.2.4.1 Распечатанные этикетки

Шаблоны этикеток создаются в элек-

тронном виде на бело-голубой перга-
ментной бумаге плотностью 100 г/м

или

любой другой подходящей антикоррози-
онной бумаге архивного качества с глад-
кой поверхностью, которую не проткнет
ручка при нанесении записи на этикет-

ку. Шаблоны определительных этикеток
также могут быть созданы в электрон-
ном виде для каждого энтомолога.

Информация о месте происхождения

и определительные данные могут быть
созданы в электронном виде или напи-
саны от руки при помощи специальной
ручки для архива или ручки со стойким
черными чернилами и самым маленьким
размером стержня, обычно – 0,18 (ручки
фирмы «Rotring») или 1 (ручки фирмы
«Artline» или похожие ручки).

Независимо от того, созданы ли эти-

кетки посредством электронных инстру-
ментов или написаны от руки, их размер
составляет порядка 8 мм × 15 мм – для
наколотых образцов и 10 мм х 20 мм –
для образцов в этиловом спирте, само-
клеящиеся этикетки для образцов, за-
фиксированных на предметных стеклах,
предварительно нарезаются.

Все этикетки, созданные в электрон-

ном виде и распечатанные, необходимо
нагреть в небольшой настольной печ-
ке для закрепления чернил на бумаге и
предотвращения их размазывания или
растекания. Смотрите инструкции про-
изводителя для выбора наиболее подхо-
дящей печки.

Инструкции по сушке энтомологических
этикеток

Печка для сушки этикеток должна ис-
пользоваться только для бумаги!

Не

для:

жира;

пищевых продуктов;

других химических веществ;

Нарежьте этикетки полосками или
поместите всю страницу на прово-
лочную сетку.

Сушите этикетки в течение одной ми-
нуты при 160°C.

Засеките время на часах или на секун-
домере:

Рисунок 39.

Микроинструменты, используемые

для приготовления энтомологического препарата

8. Референтные коллекции

139

Внимательно следите! Исследуйте
этикетки под микроскопом.

Бумага должна быть гладкой и
блестящей, а не зернистой или
пятнистой.

Этикетки с информацией о месте
происхождения

Этикетки с информацией о месте про-

исхождения для всех образцов должны
содержать уникальный регистрацион-
ный или учетный номер в целях отсле-
живаемости, данные о месте (или стране
происхождения), хозяине, дату сбора:

регистрационный/учетный номер;

страна происхождения;

хозяин и место обнаружения (на вто-
рой этикетке, если необходимо);

ФИО лица, осуществившего сбор;

дата.

Идентификационные (Опред.) этикетки

Вторая определительная или ИД эти-

кетка используется для указания назва-
ния вида, лица, проведшего идентифика-
цию, и года идентификации:

Семейство (или подсемейство, если
известно) заглавными буквами;

Род и вид: курсивом (если создано
на компьютере); название рода на-
чинается с заглавной буквы, вида – со
строчной;

Лицо, проведшее идентификацию:
инициалы и фамилия, год.

Если название длинное, год может
быть сокращен до последних двух
цифр после апострофа (’13).

Опред.: М.Дж. Паркер, 2013.

Опред.: М.Дж. Паркер, 01 янв. 2013.

Опред.: С.П. Кортешевский, ’13.

Этикетки последующей повторной
идентификации

Эти этикетки должны быть нанесены

на образец без удаления этикетки перво-
начальной идентификации.

Примечание:

После повторной иден-

тификации, в систематизированные до-
кументы, относящиеся к образцу, воз-
можно, придется внести изменения.

Размещение этикеток на наколотые
образцы

Этикетка с информацией о месте сбо-

ра должна быть помещена на расстоянии
примерно 5 мм от наколотого образца.
Примеры этикеток приведены ниже.

Для накалываемых образцов

(рис. 40А) место прокалывания должно
быть примерно в середине этикетки, не
затрагивая надпись. Этот метод обеспе-
чивает максимальную защиту хрупких
частей тела образца.

В случае с образцами, наколотыми

непосредственно на булавку, этикетка
располагается по центру под образцом;
горизонтальная ось этикетки должна
располагаться в том же направлении, что
горизонтальная ось образца.

В отношении образцов, прикреплен-

ных к картону или при помощи двойного
закрепления (рис. 40Б), вонзите булавку в
центр правой стороны этикетки так, чтобы
длинная ось этикетки была расположена в
том же направлении, что и картонная кар-
точка. Этикетка протыкается булавкой с
правой стороны от текста. Таким образом
меньше повреждаются надпись и образец.

Оставьте достаточно свободного ме-

ста между этикетками, чтобы данные
можно было прочитать без наклонения
этикетки. Наклонение этикеток может
ослабить их крепление, они могут про-
ворачиваться на булавке, что создает
риск повреждения соседних образцов.

Когда крепление этикеток становит-

ся слабым, снимите этикетку и закройте
отверстие ногтем большого пальца, а за-
тем наколите ее вновь, проделав новое
отверстие.

140

Расположение этикеток на образцах,
хранящихся в пробирках

Это относится к этикеткам для об-

разцов, хранящихся в стеклянных или
пластиковых пробирках, сухими или в
этиловом спирте. Эти этикетки больше,
чем этикетки для наколотых образцов
(до 15 мм × 40 мм), данные о месте про-
исхождения и идентификации находят-
ся на одной этикетке, расположенной
вдоль длины пробирки. Используйте
только одну этикетку, которая должна
помещаться внутрь пробирки (рис. 41).

Данные о месте происхождения рас-

полагаются слева, данные об идентифи-
кации – справа.

Накрутите этикетку на карандаш над-

писью наружу для того, чтобы она была
слегка скрученной, прежде чем поме-
стить ее в пробирку. Это позволяет эти-
кетке оставаться прижатой к стеклу, и
плавающие образцы не смогут засло-
нить надпись.

Если необходимо вставить вторую

этикетку: чтобы обеспечить читаемость

обеих этикеток, вставьте простой лист
бумаги шириной с пробирку, чтобы раз-
делить их так, чтобы надписи на обеих
этикетках смотрели наружу.

Если образцы хранятся в 96%-ном

этиловом спирте для целей молекуляр-
ной диагностики, это должно быть указа-
но на этикетке.

Расположение этикеток на образцах на
предметных стеклах

Этикетка с информацией о месте про-

исхождения помещается на правой сто-
роне, если голова образца смотрит вниз.

Этикетка с информацией об иденти-

фикации помещается на левой стороне
предметного стекла (рис. 42).

8.2.5 Размягчение сухих образцов

Размягчение не требуется для только

что умерщвленных образцов. Некоторые
образцы, однако, погибают при транспор-
тировке в лабораторию и становятся сухи-
ми и ломкими; они должны быть размяг-
чены, чтобы предотвратить повреждение
частей тела во время накалывания.

Рисунок 40. А

– Образец, напрямую наколотый на булавку, демонстрирующий расположение этикеток;

– Образец, наколотый на картон, демонстрирующий расположение этикеток и место накалывания

8. Референтные коллекции

141

Рисунок 41.

Пример этикетки для образца, хранящегося в пробирке

Рисунок 42.

Нанесение этикетки на образец, зафиксированный на предметном стекле

Простая процедура размягчения:

Налейте на дно камеры для размягче-
ния (воздухонепроницаемый контей-
нер или сушилка) теплую воду при-
мерно до 1 см, поместите решетку над
водой и накройте ее фильтровальной
бумагой или тканью.

Добавьте несколько капель гвоздич-
ного масла или дезинфицирующего
средства для предотвращения разви-
тия плесени.

Поместите образцы на фильтроваль-
ную бумагу в неглубокую посуду, та-
кую как чашка Петри или пластиковая
крышка.

Закройте камеру для размягчения и
оставьте на ночь. Длительность раз-
мягчения отличается для разных на-
секомых и размеров.

Кроме того, для получения быстрых

результатов поместите камеру в печь при
температуре 40°С. В течение нескольких

часов образцы должны достаточно раз-
мягчиться для того, чтобы с ними можно
было работать.

Убедитесь в том, что на этикетки в ка-

мере размягчения не были нанесены во-
дорастворимые чернила.

8.2.6 Высушивание образцов

Образцы для хранения в высушен-

ном виде,

включая раковины улиток,

должны высушиваться в подходящих кон-
тейнерах в печи при 40°C или на воздухе
при комнатной температуре в безопас-
ном контейнере до их размещения в кол-
лекцию на хранение. Высушенные образ-
цы из коллекции не следует оставлять вне
лаборатории на ночь, если только они не
помещены в закрытые контейнеры.

Температура в сушильных шкафах в

энтомологических лабораториях под-
держивается на оптимальном уровне

142

в 40°С для сушки энтомологических об-

разцов. Как правило, образцы могут

оставаться в сушильной печи до тех пор,

пока они не будут перемещены в место

постоянного хранения.

Наколотые образцы

могут быть по-

мещены в печь для сушки в лотках с от-

секами или в коробках для хранения.

Сушка в зависимости от размера и цвета

образца может длиться от нескольких

часов или ночи (например, небольшие

двукрылые

(Diptera)

) до одной недели

(например, большие черные жесткокры-

лые

(Coleoptera)

Материал на предметном стекле

должен сушиться в энтомологической

печи в течение не менее четырех не-

дель. Полное высыхание различных сред

и различных объемов сред может занять

более продолжительное время. Для вы-

сыхания образцы на предметных стеклах

помещают в печь на алюминиевых под-

носах для предметных стекол.

8.2.7 Препарирование

Препарирование – задача, требую-

щая наличия навыков и практики. Лю-

бая часть тела насекомого может быть

препарирована и закреплена на пред-

метном стекле в среде Хойера для ис-

следования. Однако после того, как трех-

мерная выступающая часть помещается

под покровное стекло, может произойти

ее повреждение, поэтому помещение

образца в ванночку, предназначенную

для использования при окрашивании,

с песком и 95%-ным этиловым спиртом

позволяет исследовать образец под раз-

ными углами. Выступающие части долж-

ны храниться в 80%-ном этиловом спир-

те с добавлением 5%-ного глицерина.

Части очень небольшого размера могут

быть зафиксированы на предметом сте-

кле с лункой.

8.2.7.1 Гениталии

Поместите брюшко и надкрылья в

70%-ный этиловый спирт; если на-

секомое было умерщвлено недавно,

нет необходимости помещать их в

этиловый спирт, нагревайте в 10%

KOH до одного часа.

Осторожно поместите гениталии

и последний измененный сегмент

брюшка в дистиллированную воду.

Переместите в 90%-ный этиловый

спирт либо после проведения наблю-

дений зафиксируйте в среде Хойера

сразу после того, как достанете из

дистиллированной воды. Учтите, что

может произойти повреждение.

Можно также временно закрепить на

предметном стекле в глицерине для ис-

следования; или исследовать в воде в

часовом стекле.

Гениталии и размягченные части

лучше всего сохраняются в глицерине в

микропробирке, наколотой вместе с об-

разцом (на одной и той же булавке).

Справочные материалы по препарированию

и подготовке гениталий чешуекрылых:

Хайден Дж.Е., Ли С., Пассоа С.К., Янг

Дж., Лэндри Дж.Ф., Назари В., Малли Р.,

Сомма Л.А. и Алмарк К.М.

2013 г. «Циф-

ровая идентификация микрочешуекры-

лых на

Solanaceae

». Форт-Коллинз, Коло-

радо, Министерство сельского хозяйства

США – Служба инспекции здоровья жи-

вотных и растений – Карантин и защита

растений. Программа идентификацион-

ных технологий (ITP) /

Hayden, J.E., Lee,

S., Passoa, S.C., Young, J., Landry, J.F.,

Nazari, V. Mally, R., Somma, L.A. &

Ahlmark, K.M.

2013. Digital identification

of microlepidoptera on Solanaceae. Fort

Collins, CO, USDA-APHIS-PPQ Identification

Technology Program (ITP). Документ до-

ступен по ссылке: http://idtools.org/id/

leps/micro/ (последний доступ осущест-

влен 17 сентября 2015 г.).

Хоар Р. Дж. Б.

, 2000 г. «Новый род

примитивных Nepticulidae

(Lepidoptera)

из восточной Австралии, с пересмо-
тренной диагностикой подсемейств
молей-малюток», «Зоологический жур-

8. Референтные коллекции

143

нал Линнеевского общества», 128(3):
289–317. (стр. 292) /

Hoare, R.J.B.

2000.

A new genus of primitive Nepticulidae
(Lepidoptera) from eastern Australia, with a
revised diagnosis of nepticulid subfamilies.
Zoological Journal of the Linnean Society,
128(3): 289–317. (p. 292).

8.7.2 Личинки двукрылых (Diptera) и

другие части насекомых

Поместите личинку в воду в препа-
ровальную ванночку и разрежьте
кутикулу тонкими анатомическими
ножницами вдоль одной стороны,
начиная вблизи переднего края, про-
ходя ниже бокового дыхательного от-
верстия и почти до заднего края.

Поместите личинку в раствор Эсси-
га / Уикли и осторожно нагревайте в
течение одного часа. Когда личинка
хорошо размягчиться, удалите содер-
жимое тела.

Почти полностью отделите заднюю
дыхальцевую зону от оставшейся ча-
сти кожицы и вытяните головную и
глоточную часть скелета из тела. По-
местите кожу в 95%-ный этиловый
спирт.

Закрепите на предметном стекле в
растворе Хойера кожей наизнанку
так, чтобы головная и глоточная часть
скелета с ротовыми крючками была
расположена на некотором рассто-
янии от кожи и задняя дыхальцевая
зона расположена обоими дыхальца-
ми вверх.

В случае с некоторыми другими по-

рядками голова образца осторожно за-
крепляется на предметное стекло так,
чтобы можно было исследовать ротовые
органы.

Другие части тела насекомого, такие

как усики, ноги и щупальца, могут быть
закреплены на предметное стекло непо-
средственно в растворе Хойера.

8.2.7.3 Набивка образцов Orthoptera,

Cicadidae и Phasmatodea

Может потребоваться препариро-

вание крупных кузнечиков, крупных
полужесткокрылых

(Hemiptera)

(напри-

мер,

Cicadidae

) и других прямокрылых

насекомых для их постоянного хране-
ния в высушенном виде. Используя ана-
томические ножницы, сделайте надрез
под брюшком; кишечник с содержимым
удаляется пинцетом, полость протирает-
ся ватой, смоченной в этиловом спирте,
а затем чистая вата помещается внутрь
полости для заполнения пространства.
Разрезанные края могут быть соедине-
ны и склеены до того, как образец будет
сушится в печке.

Для сохранения брюшка привиде-

ньевых

(Phasmatodea)

твердым до суш-

ки в печи, возможно, потребуется через
конец брюшка удалить кишечник с со-
держимым и поместить внутрь нейло-
новые щетинки.

8.2.7.4 Процедура препарирования

крыльев чешуекрылых
(Lepidoptera)

Аккуратно отрежьте крылья в месте
нижнего прикрепления к образцу.

Продезинфицируйте крылья чешу-
екрылых, поместив их в бытовой от-
беливатель или в отбеливатель для
белья (5%-ный раствор гипохлорита
натрия) на 1-3 минуты. Предвари-
тельное смачивание этиловымвым
спиртом активирует процесс дезин-
фицирования.

Примечание:

за про-

цессом дезинфицирования следует
внимательно наблюдать под микро-
скопом, так как крылья могут повре-
диться, если остаются в химическом
веществе слишком долго.

Как только жилки станут видимыми,
достаньте крылья из отбеливателя и
промойте их в чистой воде.

Удалите чешуйки

Lepidoptera

в воде

при помощи щетки с тонкой щетиной.

144

Крыло без чешуек, при желании, за-
тем можно окрасить раствором фук-
синсернистой кислоты.

Промойте в 95%-ном этиловом спир-
те и закрепите на предметном стекле
в глицерине или растворе Хойера.

Для подготовки постоянного препа-
рата поместите крылья в гвоздичное
масло на 5-10 минут перед закре-
плением в эупарале или канадском
бальзаме.

Расположите крыло, как пожелаете,
переворачивая его, если необходимо,
и убедившись в том, что его основание
хорошо растянуто, и все жилки видны.

8.2.8 Процедура фиксации небольших

членистоногих на предметном

стекле

Подготовку препаратов на предмет-

ных стеклах всех образцов для рефе-
рентной коллекции необходимо прово-
дить согласно процедуре закрепления
для постоянного хранения. Процедура
закрепления для временного хранения
также приводится ниже. Она может быть
использована для быстрой идентифи-
кации и кратковременного хранения и
может быть переделана в препарат для
постоянного хранения.

8.2.8.1 Процедура для ногохвостиков

(Collembola), тлей и незрелых

особей полужетскокрылых

(Hemiptera) (клопы)

Поместите образцы в раствор Эсси-
га/Уилки в ванночку, предназначен-
ную для использования при окраши-
вании.

Накройте стеклянной крышкой и на-
несите этикетку с уникальным иден-
тификационным номером.

Нагревайте до осветления раствора
(от 30 минут до часа) на нагреватель-
ной плитке или под лампочкой в вы-
тяжном шкафу.

При необходимости добавьте 3 или 4

капли окрашивающего раствора фук-

синсернистой кислоты.

Извлеките содержимое тела и повто-

рите, при необходимости, используя

новый раствор Эссига/Уилки.

Для постоянных препаратов

Поместите в 25%-ный этиловый спирт

на 5-10 минут.

50%-ный этиловый спирт – на 5-10

минут.

75%-ный этиловый спирт – на 5-10

минут.

100%-ный этиловый спирт – на 5-10

минут.

Гвоздичное масло – на 5-10 минут.

И, наконец, закрепите непосред-

ственно в канадском бальзаме.

Для временных препаратов

Закрепите непосредственно в рас-

творе Хойера (ногохвостки также могут

быть осветлены в молочной кислоте в

духовке при 40°С).

8.2.8.2 Трипсы (Thysanoptera)

Процедура подготовки постоянного
препарата

Поместите в 10%-ный KOH или рас-

твор Эссига/Уилки на различное

время, в зависимости от цвета об-

разца:

черные или темно-коричневые –

на несколько часов;

бледные – на 2 часа.

Переместите в воду (не менее чем на

1 час, можно оставить на несколько

дней).

Переместите в 30%-ный этиловый

спирт (на 1 час, можно оставить на 2-3

дня).

Переместите в 70%-ный этиловый

спирт (на 1 час, можно оставить на 2-3

дня).

Переместите в 95%-ный этиловый

спирт (на 1 час, можно оставить на 2-3

дня).

8. Референтные коллекции

145

Переместите в чистый спирт (на 1 час,
можно оставить на 2-3 дня).

Поместите в гвоздичное масло (не
менее чем на 1 час, можно оставить
на 2-3 дня).

Закрепите на предметном стекле в
канадском бальзаме, обычно один
трипс на одно предметное стекло; го-
лова образца смотрит вниз.

Процедура подготовки временного
препарата

Поместите трипсов в раствор Эссига/
Уилки в лунку часового стекла на раз-
ное время в зависимости от цвета об-
разца.

Накройте стеклянной крышкой, нане-
сите этикетку и положите под лампу
для осветления.

После осветления (примерно в тече-
ние 1 часа, в зависимости от цвета
образца), удалите внутренние части;
промойте образец в 70-96%-ном эти-
ловом спирте.

Закрепите на предметном стекле в
среде Хойера, обычно один трипс на
одно предметное стекло, спинкой
вверх, головой в сторону специалиста.

Нанесите на препарат этикетку, при
этом головка образца должна смо-
треть вниз.

Справочный материал: Трипсы-Ви-

ки. 2013. «Сбор и подготовка трипсов
для исследования». Доступно по ссыл-
ке: http://thrips.info/wiki/Collecting_and_
preparing_thrips_for_study (последний
доступ осуществлен 22 сентября 2015 г.).

8.2.8.3 Процедура подготовки

препаратов щитовок-
щитоносцев и ложнощитовок
(Hemiptera: Diaspidi- dae и
Coccidae) для временного
хранения

Целью подготовки этого препарата

является устранение как внешней секре-
ции, покрывающей тело, так и внутренних

органов, не повреждая при этом внешние
диагностические структуры тела.

Под бинокулярным микроскопом до-
станьте образцы из пробирок и рас-
тительного субстрата и поместите
их в ванночку, предназначенную для
использования при окрашивании, со-
держащую раствор Эссига/Уилки.

Осторожно удалите чешуйки с по-
крытия (контроли), сделайте прокол
в брюшной среднегрудной зоне и до-
бавьте несколько капель фуксинсер-
нистой кислоты к красителю.

Накройте стеклянной крышкой, нане-
сите этикетку и поместите под лампу
для осветления. Образцы могут быть
продуты и слегка вычищены на этом
этапе, чтобы содействовать процес-
су осветления. Свежие образцы, как
правило, осветляются должным об-
разом в течение 1-2 часов.

Переместите в свежий раствор Эссиг-
са/Уилки, извлеките внутренние ча-
сти, а затем промойте образец в 75%-
ом этиловом спирте.

Закрепите в среде Хойера на пред-
метном стекле брюшной стороной
вверх с хвостовым щитком, смотря-
щим вверх.

Нанесите этикетку на предметное
стекло.

8.2.8.4 Процедура подготовки

препаратов мучнистых
червецов (Hemiptera:
Pseudococcidae) и гигантских

червецов (Hemiptera:

Monophlebidae)

Целью подготовки этого препарата

является устранение как внешней секре-
ции, покрывающей тело, так и внутренних
органов, не повреждая при этом внешние
диагностические структуры тела.

Под бинокулярным микроскопом из-
влеките образцы из растительного
субстрата и пробирок и поместите

146

их в ванночку, предназначенную для
использования при окрашивании, со-
держащую раствор Эссига/Уилки.

Сделайте небольшой надрез тонкой
иглой на спинной стороне червеца
или щитовки между тазиками задних
ног.

Поместите несколько капель хлоро-
форма для удаления воскового слоя
на теле и несколько капель фуксин-
сернистой кислоты для окрашивания.

Накройте ванночку, предназначен-
ную для использования при окраши-
вании, стеклянной крышкой, нане-
сите этикетку и поместите под лампу
для осветления. Образцы могут быть
продуты и слегка вычищены на этом
этапе для содействия осветлению.
Свежие образцы, как правило, освет-
ляются должным образом в течение
1-2 часов.

Переместите в свежий раствор Эсси-
га/Уилки, извлеките внутренние ча-
сти, а затем промойте образец в 75%-
ном этиловом спирте.

Закрепите на предметном стекле в
среде Хойера брюшком вверх и голо-
вой вниз.

Нанесите этикетку на предметное
стекло.

8.2.8.5 Процедура подготовки

препаратов мучнистых
червецов и щитовок (Hemiptera:
Coccoidea) для длительного
хранения при помощи
микроволновой печи

Переместите щитовок или мучнистых
червецов из растительного материа-
ла в сухую ванночку, предназначен-
ную для использования при окра-
шивании. На этом этапе могут быть
сделаны наблюдения – паразитизм,
образец живой или мертвый, про-
ведены подсчеты, предварительная
идентификация и т.д.

Накапайте 95%-ный этиловый спирт
на червецов, чтобы он проник в воск.

Сделайте прокол в среднегрудной ча-
сти – минибулавка с держателем иде-
ально подходит для этой цели.

Переместите насекомых в раствор
Эссига/Уилки с добавлением одной
или двух капель раствора фуксин-
сернистой кислоты; используйте 1 мл
жидкости в пробирке емкостью 5 мл.
Неплотно закройте крышкой – не за-
кручивайте ее. Крышка должна иметь
3-4 вентиляционных отверстия, так
как содержимое будет кипеть в про-
бирке (плотно закрытая пробирка
может взорваться).

Поместите в микроволновую печь на
1 минуту.

Примечание:

Время и мощ-

ность будет зависеть от мощности
(количество потребляемых ватт) ис-
пользуемой микроволновой печи.
Фенольные соединения будут испа-
ряться, поэтому используйте вытяж-
ной шкаф.

Как только пробирка достаточно
остынет, вылейте жидкость в ван-
ночку для окрашивания. Насекомые
должны быть осветлены. Если насеко-
мые не осветлены, то аккуратно про-
дуйте насекомое для очистки, а затем
поместите обратно в пробирку и по-
местите в микроволновую печь еще
на одну минуту.

Переместите насекомых в 95%-ный
этиловый спирт. Используйте пинцет
с плоским кончиком, чтобы аккурат-
но выровнять брюшно-спинную зону,
при этом вытолкнуть оставшееся вну-
треннее содержимое. Насекомые те-
перь могут быть закреплены в среде
Хойера.

Незамедлительно поместите в гвоз-
дичное масло в ванночку для окраши-
вания. Накройте ванночку и помести-
те в микроволновую печь на 1 минуту.

Примечание:

время и мощность будет

зависеть от мощности (количество
потребляемых ватт) используемой

8. Референтные коллекции

147

микроволновой печи. Масло не ки-
пит, поэтому пробирка не использу-
ется. Масло растворяет следы жира
и воска, которые в противном случае
затемняют препараты в канадском
бальзаме. Для некоторых насекомых,
например, очень жирных червецов
или гигантских червецов, может воз-
никнуть необходимость повторить
этот этап в свежем гвоздичном масле,
если гвоздичное масло имеет густой
мутный вид после нагрева в микро-
волновой печи.

Переместите непосредственно в ка-
надский бальзам на предметных сте-
клах.

Справочный материал: Процедура

подготовки препарата на предметном
стекле – это модификация метода, пред-
ложенного в работе

Ло П.Л. и Бланка Р.Х.

1989 г. «Обследование видов щитовок-щи-
тоносцев (Hemiptera:

Diaspididae

) в садах

киви». Журнал «Энтомолог Новой Зелан-
дии» 12: 1-4 /

Lo, P.L. & Blank, R.H.

1989. A

survey of armoured scale species (Hemiptera:
Diaspididae) in kiwifruit orchards. New
Zealand Entomologist, 12: 1–4.

8.2.8.6 Клещи (Acari)

Хорошо склеротизированных кле-

щей следует осветлять в молочной кис-
лоте до приготовления препарата на
предметном стекле. Избегайте чрезмер-
ного осветления в молочной кислоте, так
как это может чрезмерно осветлить кле-
щей и усложнить работу с ними.

Для того чтобы достать клещей из

растительного субстрата, смочите иглу в
молочной кислоте, среде Хойера или ис-
пользуйте тонкую кисть для рисования.

Поместите их в ванночку для окраши-
вания или на предметное стекло с лун-
кой с молочной кислотой и нагревайте
под лампой, на нагревательной плит-
ке или в печи при температуре 70°С.

Закрепите осветленный образец на

предметном стекле в среде Хойера.

Слегка склеротизированные и не-

склеротизированные клещи могут быть

сразу закреплены на предметном стекле

в среде Хойера. Поместите предметное

стекло на нагревательную плитку для ос-

ветления при температуре 70°С. Образ-

цы, как правило, осветляются для иден-

тификации в течение часа.

Справочный материал:

Дули Дж.

2002 г. «Подготовка препарата образ-

ца». Сан-Франциско, Калифорния: Ка-

рантин и защита растений /

Dooley, J.

2002. Specimen preparation. San Francisco,

CA: PPA. Документ доступен по ссылке

адресу: http://keys.lucidcentral.org/keys/

v3/whitefly/PDF_PwP%20ETC/Slide%20

Prep%20Training.pdf (последний доступ

осуществлен 22 сентября 2015 г.).

8.2.8.7 Незрелые особи белокрылок

и листоблошек (Hemiptera,

Psylloidea: Aleyrodidae) (пупарии)

Поместите образцы в 75%-ный этило-

вый спирт.

Переместите образцы в 10%-ный KOH

и осветляйте в течение нескольких

часов при комнатной температуре.

(

Примечание:

никогда не нагревайте

образцы белокрылки в KOH, так как

это влияет на хитин и снижает его

способность удерживать окраску).

Не помещайте черные экземпляры в

KOH, так как это вызывает сморщива-

ние их кожи.

Замочите в 75%-ном этиловом спирте

(делать надрезы необязательно), а за-

тем в отбеливающем растворе пере-

киси водорода и гидроксида аммо-

ния в пропорции 50:50.

Убедитесь в том, что образцы погру-

жены в раствор. Проверяйте каждые

15 минут.

Как только образцы станут равномер-

ного коричневого цвета, перемести-

те их в 75%-ный этиловый спирт для

промывания и нейтрализации KOH.

148

Переместите в раствор Эссига/Уикли
с окрашивающей фуксинсернистой
кислотой.

Переместите в гвоздичное масло.
Никогда не пытайтесь продувать или
извлекать содержимое тела личинок
(нимф), так как щетинки – очень тон-
кие и легко повреждаются. Оставьте
на 5-10 минут, пока они не осветлятся.

Поместите крошечную каплю на
предметное стекло, распределите
так, чтобы покрыть всю зону покров-
ного стекла.

Разместите образцы; позвольте ка-
надскому бальзаму стать немного
липким.

Поместите покровное стекло осто-
рожно на бальзам и образцы.

Если бальзам не покрывает зону по-
кровного стекла, вы можете добавить
еще немного бальзама.

8.2.8.8 Взрослые особи белокрылки

Процедура
временного закрепления

Поместите образцы в 70%-ный этило-
вый спирт.

Поместите образец на предметное
стекло со средой Хойера. Образцы на
предметном стекле должны быть рас-
положены спинкой вверх или на боку.
Расположить на боку труднее, но необ-
ходимые структуры лучше различимы.

Нагревайте предметное стекло при
40-60°С в течение нескольких часов.

Процедура
постоянного закрепления

Поместите образцы в 70%-ный этило-
вый спирт (делать надрезы не обяза-
тельно, и их не следует делать).

Используйте лопаточку, достаточно
широкую для поддержания большин-
ства частей тела и крыльев, когда вы
переносите их из одного реактива в
другой.

Переместите образцы в 10%-ный KOH
и осветляйте в течение нескольких
часов при комнатной температуре.
Лучше всего оставить на ночь, если
только не требуется провести бы-
строе определение.

Примечание:

Ни-

когда не нагревайте образцы в KOH!

Переместите в этиловый спирт для
промывания и нейтрализации KOH.

Переместите в раствор Эссига/Уилки
с окрашивающим веществом (ногами
вниз, спинкой вверх; не обязательно
погружать весь образец, иначе кры-
лья, скорее всего, будет невозможно
отделить от остальной части тела);
нагревайте при 50°C (не пытайтесь
извлечь содержимое тела, так как бе-
локрылка становится очень липкой в
нагретом растворе Эссига/Уилки).

Переместите в гвоздичное масло и
извлеките содержимое тела очень
тонкой изогнутой иглой (булавки для
насекомых № 00 или 0); поместите об-
ратно в раствор Эссига/Уилки (окра-
шенный или неокрашенный), при
необходимости, и нагревайте. Вновь
поместите в гвоздичное масло, если
образцы нагревались в растворе Эс-
сига/Уилки.

Закрепите образцы на предметном
стекле при помощи покровного стек-
ла с креплениями (крепления должны
быть виниловыми или из короткой мо-
новолоконной медной рыболовной
проволоки диаметром около 0,25 мм).

Примечание:

важно поместить об-

разцы в очень тонкий слой жидкого
канадского бальзама, разбавленного
ксиленом до текучего или капающего со-
стояния, иначе усики, а зачастую и ноги,
разрушатся и станут бесполезными для
целей идентификации. Густой бальзам
не может проникнуть через небольшие
отверстия в этих структурах достаточно
быстро. Густой бальзам можно добавить
перед покрытием покровным стеклом,
и, вероятно, густой бальзам необходим
для предметных стекол с креплением в

8. Референтные коллекции

149

любом случае, так как ксилен испарится,
оставив недостаточное количество баль-
зама для покрытия образцов.

Образцы должны быть расположены
спинкой вверх или на боку. Располо-
жить их на боку сложнее, но необхо-
димые структуры – лучше различимы.

Справочный материал: Эта процеду-

ра была взята из временного ключа по
взрослым белокрылкам Калифорнии,
автор – Р. Дж. Джилл / R.J. Gill (1989 г., не-
опубликованные данные).

8.2.9 Справочные материалы по

методам подготовки препаратов и

их фиксации

Авторы рекомендуют следующую ли-

тературу по методам подготовки и фик-
сации образцов. В этих справочных ма-
териалах приводятся методы подготовки
препаратов различных групп.

Общие

Науманн Д.И.

, под ред. 1991 г. «Насе-

комые Австралии: учебник для студентов
и научных работников» (части 1 и 2). Мель-
бурн, Издательство «Melbourne University
Press». С.1029 /

Naumann, D.I.

, ed. 1991. The

insects of Australia: a textbook for students
and research workers (Parts 1 & 2). Melbourne,
Melbourne University Press. 1029 pp.

Уокер A.K. и. Кросби T.K.

1988 г.

«Подготовка и курирование насекомых»,
новое пересмотренное издание. Но-
возеландская информационная серия
УНПИ (Управление научных и промыш-
ленных исследований) 163. Веллинг-
тон, Издательство научной информа-
ции УНПИ. С 92 /

Walker, A.K. & Crosby,

T.K.

1988. The preparation and curation

of insects, new revised edn. New Zealand
DSIR Information Series 163. Wellington,
DSIR Science Information Publishing
Centre. 92 pp. Доступно по ссылке: http://
www.landcareresearch.co.nz/resources/
collections/nzac/specimen-preparation-

and-curation (последний доступ осущест-
влен 17 сентября 2015 г.).

Стер Ф.В.

, под ред. 1987 г. «Незрелые

насекомые». Дабек, Айова, Издатель-
ство «Kendall / Hunt Publishing». С. 754.
(Т. 1, стр. 9-17) /

Stehr, F.W.

, ed. 1987.

Immature insects. Dubuque, IA, Kendall/
Hunt Publishing. 754 pp. (Vol. 1, pp. 9–17).

Клещи (Acari)

Кранц Г.В. и Уолтер, Д.Е.

2009 г. «Ру-

ководство по акарологии», 3-е изд. Лаб-
бок, Техас, Издание «Texas Tech University
Press». С. 816. (Стр. 83-96) /

Krantz, G.W. &

Walter, D.E.

2009. A manual of acarology,

3rd edn. Lubbock, TX, Texas Tech University
Press. 816 pp. (pp. 83–96).

Джеппсен Л.Р., Ллойда Х.Х., Кифер

H.H. и Бейкер Е.В.

, 1975 г. «Клещи, по-

вреждающие экономически важные рас-
тения». Беркли, Калифорния, Издатель-
ство «University of California Press». С. 614.
(Стр. 385-392) /

Jeppson, L.R., Keifer,

H.H. & Baker, E.W.

1975. Mites injurious to

economic plants. Berkeley, CA, University
of California Press. 614 pp. (pp. 385–392).

Пауки (Araneae)

Убик Д., Пакуин П., Кушинга П.Е. и

Рот Б.

, под ред. 2005 г. «Роды пауков Се-

верной Америки: руководство по иден-
тификации». Американское арахноло-
гическое общество. (стр. 8-9) /

Ubick, D.,

Paquin, P., Cushing, P.E. & Roth, V.

, eds.

2005. The spider genera of North America:
an identification manual. The American
Arachnological Society. (pp. 8–9).

Жесткокрылые (Coleoptera)

Бут Р.Г., Кокс М.Л. и Мэдж Р. Б.

1990 г.

«Руководство по насекомым, имеющим
важное значение для человека. Том 3.
Coleoptera». Оксофрд. Издательство
«Oxford University Press». С. 392 (Взрос-
лые особи, стр. 10-12;. Личинки, стр. 205-
208.) /

Booth, R.G., Cox, M.L. & Madge,

R.B.

1990. IIE guides to insects of importance

150

to man. Vol. 3. Coleoptera. Oxford, Oxford
University Press. 392 pp. (Adults, pp. 10–12;
larvae, pp. 205–208).

Двукрылые (Diptera)

Феррар П.

, 1987 г. «Руководство

по размножению и незрелым стади-
ям Diptera Cyclorrhapha». Часть 1. Текст;
Часть 2. Цифры. Лейден Е. Дж., Брилл.
Копенгаген, Издательство «Scandinavian
Science Press». С. 907. (стр. 10-12) /

Ferrar, P.

1987. A guide to the breeding habits and
immature stages of Diptera Cyclorrhapha.
Part 1. Text; Part 2. Figures. Leiden, E.J. Brill;
Copenhagen, Scandinavian Science Press.
907 pp. (pp. 10–12).

Уайт И. и Элсон-Харрис M.M.

, 1992 г.

«Плодовые мухи экономической зна-
чимости: их идентификация и бионо-
мия». Валлингфорд, СК, Международный
центр сельскохозяйственных иссле-
дований. С. 600. (Стр. 24-29) /

White, I.

& Elson-Harris, M.M.

1992. Fruit flies of

economic significance: their identification
and bionomics. Wallingford, UK, CAB
International. 600 pp. (pp. 24–29).

Дрю Р.А.И., Хупер Г.Х.С. и Бейтман М.

А.

1978 г. «Экономически значимые пло-

довые мухи южной части Тихоокеанского
региона». Квинсленд, Департамент сырье-
вой промышленности; Канберра, Депар-
тамент здравоохранения. С.137. (стр. 2-4)
/

Drew, R.A.I., Hooper, G.H.S. & Bateman,

M.A.

1978. Economic fruit flies of south

Pacific region. Queensland, Department of
Primary Industries; Canberra, Department of
Health. 137 pp. (pp. 2–4).

Фут Р.Х., Бланк Ф.Л. и Норрбом А.Л.

1993 г. «Справочник по плодовым мухам
(Diptera: Tephritidae) Америки к северу
от Мексики». Итака, штат Нью-Йорк. С.
576. (стр. 37-41)/

Foote, R.H., Blanc, F.L.

& Norrbom, A.L.

1993. Handbook of the

fruit flies (Diptera: Tephritidae) of America
north of Mexico. Ithaca, NY, Comstock. 576
pp. (pp. 37–41).

Полужесткокрылые (Heteroptera)

Слатер Дж.А. и Барановски Р.М.

1978 г. «Как распознать истинных клопов
(Hemiptera–Heteroptera)». Дабек, Айова,
Издательство «W.C. Brown» (стр. 12-15)
/

Slater, J.A. & Baranowski, R.M.

1978.

How to know the true bugs (Hemiptera–
Heteroptera). Dubuque, IA, W.C. Brown.
(pp. 12–15).

Белокрылки (Aleyroydidae)

Мартин Дж.Х.

1999 г. «Белокрыл-

ки фауны Австралии (Sternorrhyncha:
Aleyrodidae): руководство по таксоно-
мии и идентификации». Канберра, Го-
сударственное объединение научных
и прикладных исследований. (стр. 124-
125) /

Martin, J.H.

1999. The whitefly fauna

of Australia (Sternorrhyncha: Aleyrodidae):
a taxonomic account and identification
guide. Canberra, Commonwealth Scientific
and Industrial Research Organisation.
(pp. 124–125).

Тли (Aphididae)

Блэкмен Р.Л. и Истоп В.Ф.

, 2000 г.

«Тли на мировых сельскохозяйственных
культурах: руководство по идентифика-
ции и информации». 2-е издание. СК. Из-
дательство «Wiley». С. 250 (стр. 363–365) /

Blackman, R.L. & Eastop, V.F.

2000. Aphids

on the worlds crops: an identification and
information guide, 2nd edn. UK, Wiley.
250 pp. (pp. 363–365).

Ложнощитовки (Coccidae)

Джилл Р.Дж.

1988 г. «Насекомые-щи-

товки Калифорнии. Часть 1. Ложнощи-
товки (Homoptera: Coccoidea: Coccidae)».
Техническая серия по сельскохозяйствен-
ной биосистематике и фитопатоологии
№ 1. Сакраменто, Департамент продо-
вольствия и сельского хозяйства Кали-
форнии. С.132. (стр. 126–127) /

Gill, R.J.

1988. The scale insects of California. Part
1 The soft scales (Homoptera: Coccoidea:
Coccidae). Technical Series in Agricultural

8. Референтные коллекции

151

Biosystematics and Plant Pathology No. 1.
Sacramento, California Department of Food
and Agriculture. 132 pp. (pp. 126–127).

Кокциды (Coccoidea)

Джилл Р.Дж.

, 1988. «Насекомые-

щитовки Калифорнии. Часть 2. Вто-
ростепенные семейства (Homoptera:
Coccoidea)». Сакраменто, Департамент
продовольствия и сельского хозяй-
ства Калифорнии. С. 241 /

Gill, R.J.

1993.

The scale insects of California. Part 2 The
minor families (Homoptera: Coccoidea).
Sacramento, California Department of
Food and Agriculture. 241 pp.

Щитовки (Diaspididae)

Джилл Р.Дж.

1987 г. «Насекомые-щи-

товки Калифорнии. Часть 3. Щитовки-щи-
тоносцы (Homoptera: Diaspididae)». Техни-
ческая серия по сельскохозяйственной
биосистематике и фитопатологии № 3. Са-
краменто, Департамент продовольствия и
сельского хозяйства Калифорнии. С. 307 /

Gill, R.J.

1997. The scale insects of California.

Part 3. The armored scales (Homoptera:
Diaspididae). Technical Series in Agricultural
Biosystematics and Plant Pathology No. 3.
Sacramento, California Department of Food
and Agriculture. 307 pp.

Вильямс Д. Дж. и Ватсон Г.В.

1988 г.

«Щитовки тропиков южной части Тихо-
океанского региона. Часть 1. Щитовки-
щитоносцы (Diaspididae)». Валлингфорд,
СК, Энтомологический институт Между-
народного центра сельскохозяйствен-
ных исследований. (стр. 13) /

Williams,

D.J. & Watson, G.W.

1988. The scale insects

of the tropical south Pacific region. Part
1. The armoured scales (Diaspididae).
Wallingford, UK, CAB International Institute
of Entomology. (p. 13).

Мучнистые червецы (Pseudococcidae)

Вильямс Д.Дж. и дэ Виллик М.С.Г.

1992 г. «Мучнистые червецы Централь-
ной и Южной Америки». Валлингфорд,

СК, Энтомологический институт Между-

народного центра сельскохозяйствен-

ных исследований. (стр. 22) /

Williams,

D.J. & de Willink, M.C.G.

1992. Mealybugs

of Central and South America. Wallingford,

UK, CAB International. 635 pp. (p. 22).

Вильямс Д. Дж. и Ватсон Г.В.

1988 г.

«Щитовки тропиков южной части Тихоо-

кеанского региона. Часть 2. Мучнистые

червецы (Pseudococcidae)» Энтомологи-

ческий институт Международного центра

сельскохозяйственных исследований.

С. 260. (стр. 11)./

Williams, D.J. & Watson,

G.W. 1988.

The scale insects of tropical

south Pacific region. Part 2. Mealybugs

(Pseudococcidae). CAB International

Institute of Entomology. 260 pp. (p. 11).

Чешуекрылые (Lepidoptera)

Холловей Дж.Д., Брэдли Дж.Д.

и Беттс С.Р.

, под ред. 1987 г. «Руко-

водство по насекомым, важным для

человека. Т.1. Lepidoptera». Валлинг-

форд, СК, Энтомологический инсти-

тут Международного центра сельско-

хозяйственных исследований. (стр.

11–14) /

Holloway, J.D., Bradley, J.D.

& Betts, C.R.

, eds. 1987. CIE guides

to insects of importance to man. Vol.

1. Lepidoptera. Wallingford, UK, CAB

International Institute of Entomology.

(pp. 11–14).

Трипсы (Thysanoptera)

Палмер Дж.М., Моунд Л.А. и

Оме Г. Дж.

1989 г. «Руководство по зна-

чимым для человека насекомым. Т.2.

Thysanoptera». Валлингфорд, Энтомоло-

гический институт Международного цен-

тра сельскохояйственных исследований;

Лондон, Британский музей естественной

истории. С. 73. (стр. 3–5) /

Palmer, J.M.,

Mound, L.A. & du Heaume, G.J.

1989. CIE

guides to insects of importance to man.

Vol. 2. Thysanoptera. Wallingford, UK, CAB

International Institute of Entomology;

London, British Museum of Natural History.

73 pp. (pp. 3–5).

152

Трипсы-Вики.

2013 г. Сбор и под-

готовка трипсов для исследования. До-
ступно по ссылке: http://thrips.info/wiki/
Collecting_and_preparing_thrips_for_
study (последний доступ осуществлен 22
сентября 2015 г.).

8.3 Референтная коллекция нематод

8.3.1 Оборудование и реактивы

высушивающее средство (например,
силикагель, хлорид кальция, 95%-
ный этиловый спирт);

этиловый спирт;

формалин;

глицерин;

парафильм;

сушилка;

препаровальная игла;

стеклянная крышка для покрытия ча-
сового стекла;

нагреватель;

предметное стекло для микроскопа;

покровное стекло для микроскопа;

пипетка;

мелкие стеклянные шарики, тонкая
проволока или воск для закрепления
крышек;

пробирка;

часовое стекло.

8.3.2 Процедура фиксации нематод для

постоянного хранения

Выделите нематод на разных стадиях
развития, как описано в Главе 5.

Переместите живые образцы на часо-
вое стекло.

Уменьшите количество воды в часо-
вом стекле до 1 мл.

Добавьте 2 мл 3%-ного горячего фор-
малина на часовое стекло и оставьте
для затвердевания на, как минимум, 2
недели.

Примечание:

Не используйте фик-

сирующие жидкости, содержащие эти-
ловый спирт, так как это приводит к по-
вреждению.

8.3.2.1 Препараты для длительного

хранения

После умерщвления и фиксации пе-
реместите образцы из фиксирующего
вещества в 1 мл раствора Сейнхор-
ста I (20 частей 95%-ного этилового
спирта, 1 часть глицерина и 79 частей
воды) в часовом стекле.

Поместите часовое стекло с образца-
ми в сушилку с высушивающим веще-
ством на 2-3 дня.

Добавьте в два раза больше раство-
ра Сейнхорста II (5 частей глицерина
и 95 частей 95%-ного этилового спир-
та) к имеющемуся раствору в часовом
стекле.

Накройте часовое стекло стеклянной
крышкой, оставив небольшой зазор
около 1-2 мм шириной.

Храните образцы при комнатной тем-
пературе, чтобы обеспечить медлен-
ное испарение спирта в течение 2-х
недель.

Переместите образцы препароваль-
ной иглой (или же закрепите реснич-
ку или перышко на держателе для
ручек) на стеклянное предметное
стекло с каплей глицерина.

Распределите нематод, при необхо-
димости.

Добавьте маленькие стеклянные ша-
рики, тонкую проволоку или воск для
поддержания покровных стекол для
крупных нематод.

Осторожно поместите покровное
стекло и запечатайте его лаком для
ногтей.

8.3.2.2 Незакрепленные образцы

После умерщвления и фиксации пе-
реместите образцы в пробирку.

Добавьте 3%-ный формалин с 2%-ным
глицерином для предотвращения
разрушения образцов в случае испа-
рения консервирующего вещества;

Запечатайте пробирку парафильмом
и прикрепите этикетку.

8. Референтные коллекции

153

8.4 Референтная коллекция

фитопатогенов и гербарий

Референтная коллекция возбудите-

лей болезней растений и гербарий мо-
жет содержать любые из нижеприведен-
ных типов образцов:

грибы;

инвазивные растения;

паразитические растения;

части растений, пораженные патоге-
нами (например, бактериями, гриба-
ми, нематодами, вирусами, вироида-
ми, фитоплазмами,

Liberibacter)

части растений, пораженных абиоти-
ческими факторами.

В хорошей референтной коллекции

возбудителей болезней растений и в гер-
барии (в дополнение к перечисленным
во введении) должны храниться:

образцы с достаточным количеством
материала;

образцы с разными частями растений
с разными стадиями развития сим-
птомов;

образцы с разными морфологически-
ми состояниями, что касается грибов
(например, анаморф и телеоморф,
или в состоянии эцидия, пикниды,
урединия и телия);

образцы из разных стран;

образцы из разных административ-
ных районов;

множество образцов, чтобы охватить
разнообразие среди популяций;

дополнительная информация, напри-
мер, фотографии симптомов в поле и
фотографии образцов перед сушкой.

Примечание

: Можно приготовить

препарат образцов на предметных сте-
клах для микроскопа и хранить его в гер-
барии.

8.4.1 Выбор метода

Большинство образцов растений,

включая зараженные патогенами,

могут быть сохранены посредством
воздушной сушки, сушки с помощью
десикантов, сушки под прессом, лио-
фильной сушки, заморозки и ламини-
рования. Очень мясистые и хрупкие об-
разцы можно сохранить посредством
консервации для сохранения формы
образца. Преимущества и недостатки
каждого из этих методов кратко пред-
ставлены в табл. 3.

8.4.2 Требования к образцам

Образцы должны быть обработаны в

кратчайшие сроки. Если этого не дела-
ется, то наклейте на образцы этикетки и
храните их в надлежащих условиях – в
холодильнике или в прохладном зате-
ненном месте.

Примечание:

Некоторые

тропические растения становятся темно
бурыми, когда их хранят в холодильнике.

Образцы должны содержать доста-

точно материала в хорошем состоянии
для их сохранения. Перед обработкой
образцов необходимо сфотографиро-
вать их, если это требуется.

Примеча-

ние:

Сушка изменит цвет больной ткани

с симптомами и форму мясистых частей
растений.

Рекомендуется выбирать части рас-

тений, на которых проявляются разные
стадии симптоматики или разное состо-
яние патогенов. Части растений следу-
ет разрезать, чтобы они поместились в
контейнеры. Объемный материал мож-
но разрезать пополам или на четыре ча-
сти или нарезать ломтиками для упро-
щения сушки.

Необходимо надеть одноразовые

перчатки и начисто вытереть поверх-
ности рабочего стола и инструменты
дезинфицирующим средством. Это осо-
бенно важно при работе с материалом,
зараженным болезнями, которые могут
оказать неблагоприятное воздействие.

РУКОВОДСТВО по оказанию фитосанитарных диагностических услуг (ФАО, Версия 1.1) - часть 10